МОЛЕКУЛЯРНИЙ ЛАНДШАФТ ТА КЛІНІЧНА ЕВОЛЮЦІЯ КОКОВИХ ІНФЕКЦІЙ У ДІТЕЙ: ВІД КОЛОНІЗАЦІЇ ДО СИСТЕМНОЇ КАТАСТРОФИ
DOI:
https://doi.org/10.24061/2413-4260.XVI.2.60.2026.38Ключові слова:
стафілококи; ентерококи; дитячі інфекції; Quorum Sensing; суперантигени; мікробіом; антибіотикорезистентність; MRSA; педіатрія; інвазивні інфекції.Анотація
Стафілококи та ентерококи залишаються ключовими бактеріальними патогенами дитячого віку, проте їх роль у педіатричній інфектології дедалі більше виходить за межі традиційного уявлення про локальні інфекції. У статті проведено міждисциплінарний аналіз інфекційних захворювань, зумовлених Staphylococcus aureus(S. aureus) і Enterococcus faecalis (E.faecalis), з урахуванням постійної взаємодії імунної системи дитини з її мікробіомом.
Мета: здійснити огляд наукових досліджень щодо молекулярного ландшафту кокових інфекцій у дітей (Staphylococcus aureus, Enterococcus faecalis), як ведучих збудників клінічного випадку, представленого в статті, аналіз молекулярних механізмів вірулентності, здатності до інвазії, антибіотикорезистентності.
Матеріали і методи. Аналіз літературних джерел базувався на результатах опублікованих у відкритому доступі наукових робіт, з використанням інформаційно-пошукових систем PubMed, Web of Science, Scopus, Google Scholar і ResearchGate. Проаналізовано 30 наукових робіт за останні 10 років, у відповідності до теми й мети дослідження. Проведено аналіз даних бактеріологічної лабораторії КНП «Тернопільська обласна дитяча клінічна лікарня» ТОР. Вивчалася карта хворої пацієнтки з оцінкою клінічних, лабораторних даних та мікробного пейзажу вогнища інфекції.
Результати. Дані проведеного огляду літератури свідчать про фенотипічну гетерогенність кокової флори з мінливими біохімічними та ферментативними факторами патогенності, що зумовлюють вірулентність та інвазивність мікроорганізмів, формуючи антибіотикорезистентність. Зроблено акцент на необхідності переоцінки діагностичних і прогностичних підходів із переходом від етіологічного підтвердження до патогенетично орієнтованої стратифікації ризику у педіатричній практиці. Дослідження проведено відповідно до принципів біоетики та деонтології, із отриманням інформованої згоди пацієнта на публікацію клінічного випадку.
Висновки. Боротьба з інфекціями, викликаними коковою флорою, вимагає мультидисциплінарного підходу з поєднанням фундаментальних досліджень, інноваційної діагностики та нових терапевтичних втручань з активною співпрацею медичних фахівців різних спеціальностей.
Посилання
Nykytyuk SO, Levenets SS, Horishnyi MI, Horishnyi IM. Awareness of Lyme disease among vocational school students and children (Ternopil Region, Western Ukraine). Georg Med News. 2022;12(333):67-71. PMID: 36780626
Никитюк СО, Кучма ПМ, Кітто ВВ, Левенець СС, Гаріян ТВ, Якимчук ЮБ. Мультисистемный воспалительный синдром MIS-C у детей после перенесенной инфекции COVID-19. Український журнал Перинатологія і Педіатрія. 2023;4:128-35. DOI: https://doi.org/10.15574/PP.2023.96.128
Никитюк СА, Гариян ТВ, Левенец СС. Геморрагический васкулит у подростка, индууцированный вирусом COVID-19. Сучасна педіатрія. Україна. 2024;6(142):120-6. DOI: https://doi.org/10.15574/SP.2024.6(142).120126
Boyarchuk O, Perestiuk V, Kosovska T, Volianska L. Coagulation profile in hospitalized children with COVID-19: pediatric age dependency and its impact on long COVID development. Front Immunol. 2024;15:1363410. DOI: https://doi.org/10.3389/fimmu.2024.1363410
Campbell AJ, Al Yazidi LS, Phuong LK, Leung C, Best EJ, Webb RH, et al. Pediatric Staphylococcus aureus bacteremia: clinical spectrum and predictors of poor outcome. Clin Infect Dis. 2022;74(4):604-13. DOI: https://doi.org/10.1093/cid/ciab510
Rampelotto PH, Kolar M. Trends in microbiology 2024. Life. 2025;15(1):65. DOI: https://doi.org/10.3390/life15010065
Chowdhury AA, Ahmed MN, Jahan R, Rahmatullah M. Marine-derived prospective antibiotic armamentarium: from anti-quorum sensing to anti-biofilm and anti-biofouling biometabolites. Heliyon. 2026;12(2):e44524. DOI: https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2026.e44524
Boers SA, van Ess I, Euser SM, Jansen R, Tempelman FRH, Diederen BMW. An outbreak of a multiresistant methicillin-susceptible Staphylococcus aureus (MR-MSSA) strain in a burn centre: the importance of routine molecular typing. Burns. 2011;37(5):808-13. DOI: https://doi.org/10.1016/j.burns.2011.01.005
Touaitia R, Mairi A, Ibrahim NA, Basher NS, Idres T, Touati A. Staphylococcus aureus: a review of the pathogenesis and virulence mechanisms. Antibiotics (Basel). 2025;14(5):470. DOI: https://doi.org/10.3390/antibiotics14050470
Wang Y, Lin X, Du Y, Jiang H, Xu P, Sun Y, et al. Neochlorogenic acid targets caseinolytic protease P to suppress MRSA pathogenicity and unlocks a novel therapeutic avenue for osteomyelitis. Biochem Pharmacol. 2026;248:117811. DOI: https://doi.org/10.1016/j.bcp.2026.117811
Mukherjee S, Sikdar B, Chaudhuri D, Giri K, Roy S. Attenuating effect of plumbagin on Chromobacterium violaceum quorum sensing and biofilm formation: an in-vitro and in-silico approach. Microb Pathog. 2026;214:108418. DOI: https://doi.org/10.1016/j.micpath.2026.108418
Aung MS, Osada M, Urushibara N, Kawaguchiya M, Ohashi N, Hirose M, et al. Molecular characterization of methicillin-susceptible/resistant Staphylococcus aureus from bloodstream infections in northern Japan: the dominance of CC1-MRSA-IV, the emergence of human-associated ST398 and livestock-associated CC20 and CC97 MSSA. J Glob Antimicrob Resist. 2025;41:77-87. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jgar.2024.12.010
European Сommittee on Antimicrobial Susceptibility Testing. Clinical Breakpoint Tables. Version 16.0 (2026 Jan 1 – Dec 31)[Internet]. 2026[cited 2026 Feb 25]. Available from: https://www.eucast.org/clinical_breakpoints/
Lessa de Menezes I, Moura Pone S, da Silva Pone MV. Clinical, demographic characteristics and antimicrobial resistance profile of Staphylococcus aureus isolated in clinical samples from pediatric patients in a tertiary hospital in Rio de Janeiro: 7-year longitudinal study. BMC Infect Dis. 2024;24(1):1081. DOI: https://doi.org/10.1186/s12879-024-09986-7
Binkhamis KM, Alhezam IA, Alabdullatif HA, Alabdullah OM, Alkadhi OY, Alrefaei NM, et al. Invasive methicillin-susceptible and methicillin-resistant Staphylococcus aureus infections in the pediatric population: prevalence and management outcomes. Saudi Med J. 2026;47(1):47-53. DOI: https://doi.org/10.15537/smj.2026.47.1.20250549
Salmanov A, Shchehlov D, Artyomenko V, Svyrydiuk O, Maliarchuk R, Bortnik I, et al. Nosocomial transmission of multidrug-resistant organisms in Ukrainian hospitals: results of a multicentre study (2019–2021). J Hosp Infect. 2023;132:104-15. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jhin.2022.12.008
Salmanov AG, Shchehlov DV, Shkorbotun VO, Bortnik IM, Svyrydiuk O, Gudym MS, et al. Molecular epidemiology of the transmission of methicillin-resistant Staphylococcus aureus in Kyiv acute care hospitals, Ukraine. Wiad Lek. 2022;75(4 Pt 1):857-64. DOI: https://doi.org/10.36740/wlek202204120
Salmanov AG, Bondar TP, Shkorbotun YV, Chumak EA, Shkorbotun VO, Dementieva OV, et al. Prevalence of nasal carriage of methicillin-resistant Staphylococcus aureus among healthcare workers in the departments of otorhinolaryngology and dentistry in Kyiv, Ukraine. Wiad Lek. 2020;73(12 Pt 1):2563-7. DOI: https://doi.org/10.36740/WLek202012101
Blinder OO, Blinder OV, Rotar DV, Humenna AV. Dynamics of methicillin-resistant Staphylococcus aureus prevalence among patients of the Chernivtsi region. Zaporozh Med J. 2022;24(4):454-8. DOI: https://doi.org/10.14739/2310-1210.2022.4.254912
Kolbe-Busch S, Djouela Djoulako PD, Stingu CS. Trends in healthcare-acquired infections due to multidrug-resistant organisms at a German university medical center before and during the COVID-19 pandemic. Microorganisms. 2025;13(2):274. DOI: https://doi.org/10.3390/microorganisms13020274
Netsvyetayeva I, Fraczek M, Piskorska K, Golas M, Sikora M, Mlynarczyk A, et al. Staphylococcus aureus nasal carriage in Ukraine: antibacterial resistance and virulence factor encoding genes. BMC Infect Dis. 2014;14:128. DOI: https://doi.org/10.1186/1471-2334-14-128
Tamrat E, Asmare Z, Geteneh A, Sisay A, Getachew E, Kassanew B, et al. The global prevalence of biofilm-forming Enterococcus faecalis in clinical isolates: a systematic review and meta-analysis. BMC Infect Dis. 2025;25(1):981. DOI: https://doi.org/10.1186/s12879-025-11399-z
Bizot E, Truong J, Mariani-Kurkdjian P, Bonacorsi S, Faye A, Caseris M. Pediatric Enterococcus bacteremia: a 12-year retrospective study in a French pediatric center. Pediatr Infect Dis J. 2022;41(9):e346-50. DOI: https://doi.org/10.1097/inf.0000000000003631
Eltaher SS, Khattab Z, Walid G, Loay O, Emad R, Hakim C, et al. Hijacking the signal: a critical evaluation of quorum sensing inhibitors as a next-generation approach against Staphylococcus aureus. Cell Commun Signal. 2026;24(1):135. DOI: https://doi.org/10.1186/s12964-026-02674-w
Ch'ng JH, Muthu M, Chong KKL, Wong JJ, Tan CAZ, Koh ZJS, et al. Heme cross-feeding can augment Staphylococcus aureus and Enterococcus faecalis dual-species biofilms. ISME J. 2022;16(8):2015-26. DOI: https://doi.org/10.1038/s41396-022-01248-1
Lou Y, Liu Z, Zhang Q, Zhang L, Liao X, Yang T, et al. Interspecies and intraspecies “talk” shape the bacterial biofilms. Food Qual Saf. 2025;9:fyaf008. DOI: https://doi.org/10.1093/fqsafe/fyaf008
Luo A, Wang F, Sun D, Liu X, Xin B. Formation, development, and cross-species interactions in biofilms. Front Microbiol. 2021;12:757327. DOI: https://doi.org/10.3389/fmicb.2021.757327
Kao PH-N, Ch'ng JH, Chong KK, Stocks CJ, Wong SL, Kline KA. Enterococcus faecalis suppresses Staphylococcus aureus-induced NETosis and promotes bacterial survival in polymicrobial infections. FEMS Microbes. 2023;4:xtad019. DOI: https://doi.org/10.1093/femsmc/xtad019
Xu W, Fang Y, Zhu K. Enterococcus facilitate polymicrobial infections. Trends Microbiol. 2024;32(2):162-77. DOI: https://doi.org/10.1016/j.tim.2023.07.010
Al-Hassan RW, Bazzaz AA. Antibiotic resistance patterns of pathogenic bacteria in children under 5 years old with suspected septicemia in Kerkuk, Iraq. J Med Genet Clin Biol. 2026;3(3):210-7. DOI: https://doi.org/10.61796/jmgcb.v3i3.1648
Cassat JE, Thomsen I. Staphylococcus aureus infections in children. Curr Opin Infect Dis. 2021;34(5):510-8. DOI: https://doi.org/10.1097/qco.0000000000000752
Rosales-Gonzalez NC, Gonzalez-Martín M, Abdullahi IN, Tejedor-Junco MT, Latorre-Fernández J, Torres C. Prevalence, antimicrobial resistance, and genetic lineages of nasal Staphylococcus aureus among medical students at a Spanish university: detection of the MSSA-CC398-IEC-type-C subclade. Res Microbiol. 2024;175(4):104176. DOI: https://doi.org/10.1016/j.resmic.2023.104176
Kavanagh KT. Control of MSSA and MRSA in the United States: protocols, policies, risk adjustment and excuses. Antimicrob Resist Infect Control. 2019;8:103. DOI: https://doi.org/10.1186/s13756-019-0550-2
Crandall H, Kapusta A, Killpack J, Heyrend C, Nilsson K, Dickey M, et al. Clinical and molecular epidemiology of invasive Staphylococcus aureus infection in Utah children; continued dominance of MSSA over MRSA. PLoS One. 2020;15(9):e0238991. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0238991
Wood JB, Jones LS, Soper NR, Xu M, Torres VJ, Buddy Creech C, et al. Serologic detection of antibodies targeting the leukocidin LukAB strongly predicts Staphylococcus aureus in children with invasive infection. J Pediatric Infect Dis Soc 2019;8(2):128-35. DOI: https://doi.org/10.1093/jpids/piy017
Nishitani K, Beck CA, Rosenberg AF, Kates SL, Schwarz EM, Daiss JL. A diagnostic serum antibody test for patients with Staphylococcus aureus osteomyelitis. Clin Orthop Relat Res. 2015;473(9):2735-49. DOI: https://doi.org/10.1007/s11999-015-4354-2
Salman MK, Abuqwider J, Mauriello G. Anti-quorum sensing activity of probiotics: the mechanism and role in food and gut health. Microorganisms. 2023;11:793. DOI: https://doi.org/10.3390/microorganisms11030793
Bhatt MitraJ , Chatterjee S, Kumar A, Khatoon E, Chandak A, Rakshit S, et al. Expanding a peptide-covalent probe hybrid for PET imaging of S. aureus driven focal infections. EJNMMI Radiopharm Chem. 2024;9(1):25. DOI: https://doi.org/10.1186/s41181-024-00252-4
Mba Medie F, Sharma-Kuinkel BK, Ruffin F, Chan LC, Rossetti M, Chang YL, et al. Genetic variation of DNA methyltransferase-3A contributes to protection against persistent MRSA bacteremia in patients. Proc Natl Acad Sci U S A. 2019;116(40):20087-96. DOI: https://doi.org/10.1073/pnas.1909849116
Pagotto I, Alqahtani M, Joy B, McCracken GR, Davis IR, LeBlanc JJ, et al. Assessing the potential for specimen pooling to streamline nosocomial surveillance of methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA). Microbiol Spectrum. 2026;14(1):e0258525. DOI: https://doi.org/10.1128/spectrum.02585-25
Scott WK, Medie FM, Ruffin F, Sharma-Kuinkel BK, Cyr DD, Guo S, et al. Human genetic variation in GLS2 is associated with development of complicated Staphylococcus aureus bacteremia. PLoS Genet. 2018;14(10):e1007667. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pgen.1007667
Bastarache L, Hughey JJ, Hebbring S, Marlo J, Zhao W, Ho WT, et al. Phenotype risk scores identify patients with unrecognized Mendelian disease patterns. Science. 2018;359(6381):1233-9. DOI: https://doi.org/10.1126/science.aal4043
Hernandez FJ, Huang L, Olson ME, Powers KM, Hernandez LI, Meyerholz DK, et al. Noninvasive imaging of Staphylococcus aureus infections with a nuclease-activated probe. Nat Med. 2014;20:301-6. DOI: https://doi.org/10.1038/nm.3460
Ordonez AA, Weinstein EA, Bambarger LE, Saini V, Chang YS, DeMarco VP, et al. A systematic approach for developing bacteria-specific imaging tracers. J Nucl Med. 2017;58(1):144-50. DOI: https://doi.org/10.2967/jnumed.116.181792
Ordonez AA, Wintaco LM, Mota F, Restrepo AF, Ruiz-Bedoya CA, Reyes CF, et al. Imaging Enterobacterales infections in patients using pathogen-specific positron emission tomography. Sci Transl Med. 2021;13(589):eabe9805. DOI: https://doi.org/10.1126/scitranslmed.abe9805
Zhang Z, Ordonez AA, Wang H, Yong LI, Gogarty KR, Weinstein EA, et al. Positron emission tomography imaging with 2- [(18) F] F-p-aminobenzoic acid detects Staphylococcus aureus infections and monitors drug response. ACS Infect Dis. 2018;4(11):1635-44. DOI: https://doi.org/10.1021/acsinfecdis.8b00182
Jaafar SS. Enterococcus faecalis: A Mini-Review”. JUBPAS. 2022;30(2):191-200. DOI: https://doi.org/10.29196/jubpas.v30i2.4256
Gilmore MS, Lebreton F, van Schaik W. Genomic transition of enterococci from gut commensals to leading causes of multidrug-resistant hospital infection in the antibiotic era. Curr Opin Microbiol. 2013;16(1):10-6. DOI: https://doi.org/10.1016/j.mib.2013.01.006
Sulaiman AM, Hussein SA, Husain VI. Detection of Antibiotic Resistance Genes (CTX-M, Van A and Van B) of Enterococcus faecalis Isolated from Children with Bacteremia by RT-PCR. Arch Razi Inst. 2023;78(1):73-7. DOI: https://doi.org/10.22092/ari.2022.359148.2380
Liu Q, Chen R, Zhang Z, Sha Z, Wu H. Mechanisms and immune crosstalk of neutrophil extracellular traps in response to infection. mBio. 2025;16(5):e00189-25. DOI: https://doi.org/10.1128/mbio.00189-25
Stoimeni A, Gkiourtzis N, Karatisidou V, Charitakis N, Makedou K, Tramma D, et al. Neutrophil extracellular traps in pediatric infections: a systematic review. Curr Issues Mol Biol. 2025;47(12):999. DOI: https://doi.org/10.3390/cimb47120999
Berbers RM, Paganelli FL, van Montfrans JM, Ellerbroek PM, Viveen MC, Rogers MRC, et al. Gut microbial dysbiosis, IgA, and Enterococcus in common variable immunodeficiency with immune dysregulation. Microbiome. 2025;13(1):12. DOI: https://doi.org/10.1186/s40168-024-01982-y.
Repoila F, Le Bohec F, Guérin C, Lacoux C, Tiwari S, Jaiswal AK, et al. Adaptation of the gut pathobiont Enterococcus faecalis to deoxycholate and taurocholate bile acids. Sci. Rep. 2022;12:8485. DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-022-12552-3
Staley C, Weingarden AR, Khoruts A, Sadowsky MJ. Interaction of gut microbiota with bile acid metabolism and its influence on disease states. Appl Microbiol Biotechnol. 2017;101(1):47-64. DOI: https://doi.org/10.1007/s00253-016-8006-6
Archambaud C, Derré-Bobillot A, Lapaque N, Rigottier-Gois L, Serror P. Intestinal translocation of enterococci requires a threshold level of enterococcal overgrowth in the lumen. Sci Rep. 2019;9(1):8926. DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-019-45441-3
Tian Z, Khan AI, Rehman AU, Deng T, Ma C, Wang L. Virulence factors and mechanisms of paediatric pneumonia caused by Enterococcus faecalis. Gut Pathog. 2023;15(1):2. DOI: https://doi.org/10.1186/s13099-022-00522-z
Ali IAA, Lévesque CM, Neelakantan P. Fsr quorum sensing system modulates the temporal development of Enterococcus faecalis biofilm matrix. Mol Oral Microbiol. 2022;37(1):22-30. DOI: https://doi.org/10.1111/omi.12357
Desouky SE, Abu-Elghait M, Fayed EA, Selim S, Yousuf B, Igarashi Y, et al. Secondary metabolites of Actinomycetales as potent quorum sensing inhibitors targeting Gram-positive pathogens: in vitro and in silico study. Metabolites. 2022;12(3):246. DOI: https://doi.org/10.3390/metabo12030246
Antypas H, Schmidtchen V, Staiger WI, Li Y, Tan RJW, Ng KKF, et al. Fsr quorum sensing system restricts biofilm growth and activates inflammation in enterococcal infective endocarditis. Nat Commun. 2026;17(1):1668. DOI: https://doi.org/10.1038/s41467-026-68366-8
##submission.downloads##
Опубліковано
Як цитувати
Номер
Розділ
Ліцензія
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Автори, які публікуються у цьому журналі, погоджуються з наступними умовами:
- Автори залишають за собою право на авторство своєї роботи та передають журналу право першої публікації цієї роботи на умовах ліцензії Creative Commons Attribution License, котра дозволяє іншим особам вільно розповсюджувати опубліковану роботу з обов'язковим посиланням на авторів оригінальної роботи та першу публікацію роботи у цьому журналі.
- Автори мають право укладати самостійні додаткові угоди щодо неексклюзивного розповсюдження роботи у тому вигляді, в якому вона була опублікована цим журналом (наприклад, розміщувати роботу в електронному сховищі установи або публікувати у складі монографії), за умови збереження посилання на першу публікацію роботи у цьому журналі.
- Політика журналу дозволяє і заохочує розміщення авторами в мережі Інтернет (наприклад, у сховищах установ або на особистих веб-сайтах) рукопису роботи, як до подання цього рукопису до редакції, так і під час його редакційного опрацювання, оскільки це сприяє виникненню продуктивної наукової дискусії та позитивно позначається на оперативності та динаміці цитування опублікованої роботи (див. The Effect of Open Access).
Критерії авторського права, форми участі та авторства
Кожен автор повинен був взяти участь в роботі, щоб взяти на себе відповідальність за відповідні частини змісту статті. Один або кілька авторів повинні нести відповідальність в цілому за поданий для публікації матеріал - від моменту подачі до публікації статті. Авторитарний кредит повинен грунтуватися на наступному:
- істотність частини вклада в концепцію і дизайн, отри-мання даних або в аналіз і інтерпретацію результатів дослідження;
- написання статті або критичний розгляд важливості її інтелектуального змісту;
- остаточне твердження версії статті для публікації.
Автори також повинні підтвердити, що рукопис є дійсним викладенням матеріалів роботи і що ні цей рукопис, ні інші, які мають по суті аналогічний контент під їх авторством, не були опубліковані та не розглядаються для публікації в інших виданнях.
Автори рукописів, що повідомляють вихідні дані або систематичні огляди, повинні надавати доступ до заяви даних щонайменше від одного автора, частіше основного. Якщо потрібно, автори повинні бути готові надати дані і повинні бути готові в повній мірі співпрацювати в отриманні та наданні даних, на підставі яких проводиться оцінка та рецензування рукописи редактором / членами редколегії журналу.
Роль відповідального учасника.
Основний автор (або призначений відповідальний автор) буде виступати від імені всіх співавторів статті в якості основного кореспондента при листуванні з редакцією під час процесу її подання та розгляду. Якщо рукопис буде прийнята, відповідальний автор перегляне відредагований машинописний текст і зауваження рецензентів, прийме остаточне рішення щодо корекції і можливості публікації представленої рукописи в засобах масової інформації, федеральних агентствах і базах даних. Він також буде ідентифікований як відповідальний автор в опублікованій статті. Відповідальний автор несе відповідальність за подтверждленіе остаточного варіанта рукопису. Відповідальний автор несе також відповідальність за те, щоб інформація про конфлікти інтересів, була точною, актуальною і відповідала даним, наданим кожним співавтором.Відповідальний автор повинен підписати форму авторства, що підтверджує, що всі особи, які внесли істотний внесок, ідентифіковані як автори і що отримано письмовий дозвіл від кожного учасника щодо публікації представленої рукописи.
