РЕАКЦІЯ ГЕНА РАННЬОЇ ФУНКЦІОНАЛЬНОЇ АКТИВНОСТІ c-fos У ПРЕФРОНТАЛЬНІЙ КОРІ ТА ПОЛІ ГІПОКАМПА СА1 НА НЕПОВНУ ГЛОБАЛЬНУ ІШЕМІЮ-РЕПЕРФУЗІЮ ГОЛОВНОГО МОЗКУ У ЩУРІВ ІЗ КИШЕЧНИМ ДИСБАКТЕРІОЗОМ

Автор(и)

DOI:

https://doi.org/10.24061/2413-4260.XVI.1.59.2026.27

Ключові слова:

неповна глобальна ішемія-реперфузія; кишечний дисбактеріоз; префронтальна кора; гіпокамп; ген c-fos; білок c-FOS

Анотація

На сьогодні як в експерименті, так і в клініці, накопичено достатньо фактів щодо композиційних змін мікробіому кишечника при інсультах. Водночас, порушення кишкового мікробіому та його метаболітів є частиною патогенезу нейродегенеративних розладів при інсультах. Отже, вісь «мікробіота кишечника-мозок» є двобічною комунікаційною мережею, однак досі залишається багато невизначених механізмів взаємодії її складових. Дослідження in vivo та in vitro показала, що ген c-fos, який кодує ядерний білок c-Fos, відіграє важливу роль у регуляції запрограмованої загибелі нейронів при інсультах. Однак його реакція у структурах мозку на порушення функціонального стану осі «мікробіота кишечника-мозок» при порушенні церебрального кровотоку на тлі дисбактеріозу залишається майже недослідженою.

Мета роботи – з’ясувати вплив неповної глобальної ішемії-реперфузії головного мозку на активність гена c-Fos (за вмістом продукту його кодування – білка c-Fos) у префронтальній корі та полі гіпокампа СА1 щурів із кишечним дисбактеріозом.

Матеріал та методи дослідження. Дослідження проведені на 40 статевозрілих щурах-самцях, розподілених на 4 групи: І – контроль; ІІ – каротидна ішемія-реперфузія головного мозку; ІІІ – дисбактеріоз; ІV – каротидна ішемія-реперфузія на тлі дисбактеріозу. Дисбактеріоз моделювали введенням цефтріаксону (АЦС Добфар СПА, Італія) раз на добу 14 днів, 300 мг/кг внутрішньом’язово. Неповну глобальну ішемію-реперфузію головного мозку моделювали двобічною оклюзією загальних сонних артерій протягом 20 хв. із подальшою одногодинною реперфузією, що дозволяє оцінити реакцію мозку у межах терапевтичного вікна при інсультах. Після цього під каліпсоловим наркозом (75 мг/кг) здійснювали декапітацію тварин, головний мозок швидко вилучали на холоді, згідно з координатами стереотаксичного атласу забирали префронтальну кору та гіпокамп і занурювали їх у розчин Буена. Використовуючи ротаційний мікротом робили серійні зрізи завтовщки 5 мкм, депарафінували їх у ксилолі, здійснювали регідратацію в низхідних концентраціях етанолу (100 %, 96 %, 70 %), відмивали у 0,1 М фосфатному буфері (pH 7,4) і обробляли моноклональними антитілами до c-Fos антигенних детермінант. Ідентифікацію c-Fos у гістологічних зрізах досліджуваних структур мозку здійснювали методом непрямої імунофлуоресценції, застосовуючи комп’ютерну систему цифрового аналізу зображення VIDAS-386 (“Kontron Elektronik”, Німеччина) в ультрафіолетовому спектрі. Зображення за допомогою високочутливої відеокамери COHU-4722 (COHU Inc., США) вводили в комп'ютерну систему цифрового аналізу VIDAS-386 (Kontron Elektronik, Німеччина) і оцифровували за денситометричною шкалою. Експериментальні втручання та евтаназію тварин здійснювали згідно з основними положеннями Конвенції Ради Європи про охорону хребетних тварин, що використовують в експериментах та інших наукових цілях, від 18.03.1986 р.; Директиви ЄЕС № 609 від 24.11.1986 р. і Наказу МОЗ України № 690 від 23.09.2009 р. Комісією з біоетики Буковинського державного медичного університету порушень морально-етичних норм при проведенні науково-дослідної роботи не виявлено (протокол № 5 від 16.12.2024). Отримані результати опрацьовані пакетом прикладних і статистичних програм VIDAS-2.5 (Kontron Elektronik, Німеччина), EXCEL з пакета MS Office 2007 (Microsoft Corp., США. Розраховували значення середньої арифметичної вибірки (М), її дисперсії і помилки середньої (m). Для виявлення достовірності відмінностей між показниками визначали коефіцієнт Стьюдента (t), ймовірність відмінності вибірок (р) і довірчий інтервал середньої. Критичний рівень значущості при перевірці статистичних гіпотез приймали рівним 0,05. Дослідження виконане у межах НДР «Механізми нейроімуноендокринної взаємодії, фактори ризику їх дизрегуляції та можливості фармакологічної корекції», реєстраційний номер 0124U002609. Термін виконання 12.2024 – 12.2028 рр.

Результати дослідження. Каротидна ішемія-реперфузія призводила до достовірного зростання усіх вивчених показників, що характеризують реакцію c-Fos-імунопозитивних нейронів префронтальної кори: щільність розташування c-Fos-імунопозитивних нейронів зросла на 25 %, сумарна площа флуоресценції (СПФ), площа флуоресценції, пов’язана з дифузною імунореактивністю (ПФДІ) у 64 та 9,5 рази відповідно. Характерно, що у цій зоні кори площа флуоресценції, пов’язана з клітинною імунореактивністю (ПФКІ) у тварин групи контролю не визначалася, що засвідчує відсутність активності гена cfos у клітинах у стані функціонального спокою. Однак ішемія-реперфузія призвела до активації цього показника, який сягав значень 2,959±0,601. Зросли також у цій структурі загальна концентрація білка cFos (Кc-Fos) і концентрація, пов'язана з дифузною імунореактивністю (Кc-FosДІ), у 93,8 та 10,8 раза відповідно. Водночас концентрація c-FOS білка, пов’язана з клітинною імунореактивністю (Кc-FosКІ), як і слід було очікувати, зважаючи на нульові значення ПФКІ, не визначалася, однак у постішемічному періоді вона становила 9,463±2,186 ОІФ.  За цих же експериментальних умов у полі гіпокампа СА1 усі досліджені показники, що характеризують реакцію c-Fos-імунопозитивних нейронів, також перевищували контрольні: щільність розташування cFos-імунопозитивних нейронів на 25 %, СПФ, ПФДІ та ПФКІ – у 22,8, 22 та 23 рази, КcFos, Кc-FosДІ та Кc-FosКІ у 36,4, 12,5 та 54,33 раза відповідно.

У префронтальній корі та гіпокампі щурів із дисбактеріозом порівняно з показниками у групі контролю щільність розташування cFos-імунопозитивних нейронів була вищою на 14 та 35 % відповідно, значення СПФ і ПФДІ – у 24 та 9,9 раза та 18,3 і 26,6 раза відповідно; у корі визначена також ПФКІ, значення якої становило 0,751±0,258, у гіпокампі ж цей показник зріс у 14,8 раза щодо показника у тварин контролю. У корі встановлено також зростання Кc-Fos і Кc-FosДІ у 32,7 та 12,6 раза відповідно, а значення Кc-FosКІ становило (2,296±0,827; у гіпокампі параметри Кc-Fos, Кc-FosДІ та Кc-FosКІ стали вищими в 11,7, 8,9 та 13,9 раза.

Реакція c-Fos-реактивних нейронів на ішемію-реперфузію у щурів із дисбактеріозом була суттєвішою як порівняно з показниками після ішемії-реперфузії у щурів групи контролю, так і стосовно показників при дисбактеріозі: у префронтальній корі та гіпокампі щільність розташування c-Fos-імунопозитивних нейронів перевищувала на 21 та 11 % показники при дисбактеріозі та на 10 і 20 % – постішемічні значення у тварин без дисбактеріозу. СПФ, ПФДІ, ПФКІ, Кc-Fos, Кc-FosДІ та Кc-FosКІ у корі були вищими у 7,5, 2,9, 10,9, 8,38, 2,85 та 11,82 раза стосовно дисбактеріозу та у 2,8, 3,0, 2,8, 2,9, 3,3 та 2,9 раза відповідно щодо постішемічних показників без дисбактеріозу. У гіпокампі СПФ, ПФДІ, ПФКІ, Кc-Fos, Кc-FosДІ та Кc-FosКІ перевищували відповідні показники при дисбактеріозі у 4,2, 1,7, 6,2, 9,7, 5,8, 11,6 раза та показники при ішемії-реперфузії у контрольних тварин у 3,4, 2,1, 3,9, 3,1, 3,9 та 3,0 раза.

Висновки. 1. Гостре порушення церебрального кровотоку в басейні сонних артерій та кишечний дисбактеріоз мають односпрямований вплив на зміни с-Fos імунореактивності у префронтальній корі та полі гіпокампа СА1, збільшуючи як щільність розташування с-Fos нейронів, так і площу імунореактивності, однак при цьому спостерігаються кількісні відмінності, що залежать як від досліджуваної структури, так і експериментальної моделі.
2. Найсуттєвіше зростання вмісту білка с-Fos встановлено при моделюванні ішемії-реперфузії головного мозку на тлі дисбактеріозу. 3. При всіх експериментальних моделях зростання білка с-Fos відбувається переважно за рахунок підвищення його концентрації, а не збільшення кількості с-Fos-позитивних клітин.

Посилання

Yuan B, Lu XJ, Wu Q. Gut Microbiota and Acute Central Nervous System Injury: A New Target for Therapeutic Intervention. Front Immunol [Internet]. 2021[cited 2026 Jan 23];12:800796. Available from: https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC8740048/pdf/fimmu-12-800796.pdf DOI: https://doi.org/10.3389/fimmu.2021.800796
|

Mehmood Qadri H, Dar SA, Bashir RA, Khan M, Ali S, Zahid AS, et al. Gastrointestinal Dysbiosis in Neuro-Critically Ill Patients: A Systematic Review of Case-Control Studies. Cureus [Internet]. 2023[cited 2026 Jan 29];15(12):e50923. Available from: https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC10803107/pdf/cureus-0015-00000050923.pdf DOI: https://doi.org/10.7759/cureus.50923

Wayan Suryanata I, Wayan Widyantara I. Gut-Brain Axis Microbiota in Stroke Pathogenesis. IInt J Res Rev. 2024;11(12):25-45. DOI: https://doi.org/10.52403/ijrr.20241204

Xu K, Ren Z, Zhao S, Ren Y, Wang J, Wu W, et al. Fecal metabolites as early-phase biomarkers and prediction panel for ischemic stroke. BMC Microbiol. 2025;25(1):525. DOI: https://doi.org/10.1186/s12866-025-04217-8
|

Delgado Jiménez R, Benakis C. The Gut Ecosystem: A Critical Player in Stroke. Neuromolecular Med. 2021;23(2):236-41. DOI: https://doi.org/10.1007/s12017-020-08633-z
|

Singh V, Roth S, Llovera G, Sadler R, Garzetti D, Stecher B, et al. Microbiota Dysbiosis Controls the Neuroinflammatory Response after Stroke. J Neurosci. 2016;36(28):7428-40. doi: https://doi.org/10.1523/jneurosci.1114-16.2016
|

Piepke M, Jander A, Gagliani N, Gelderblom M. IL-17A-producing γδ T cells: A novel target in stroke immunotherapy. Eur J Immunol [Internet]. 2024[cited 2026 Jan 29];54(12):e2451067. Available from: https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC11628885/pdf/EJI-54-2451067.pdf DOI: https://doi.org/10.1002/eji.202451067
|

Benakis C, Brea D, Caballero S, Faraco G, Moore J, Murphy M, et al. Commensal microbiota affects ischemic stroke outcome by regulating intestinal γδ T cells. Nat Med. 2016;22(5):516-23. DOI: https://doi.org/10.1038/nm.4068
|

Tiedt S, Buchan AM, Dichgans M, Lizasoain I, Moro MA, Lo EH. The neurovascular unit and systemic biology in stroke - implications for translation and treatment. Nat Rev Neurol. 2022;18(10):597-612. doi: https://doi.org/10.1038/s41582-022-00703-z
|

Chaudhry TS, Senapati SG, Gadam S, Mannam HPSS, Voruganti HV, Abbasi Z, et al. The Impact of Microbiota on the Gut-Brain Axis: Examining the Complex Interplay and Implications. J Clin Med [Internet]. 2023[cited 2026 Jan 27];12(16):5231. Available from: https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC10455396/pdf/jcm-12-05231.pdf doi: https://doi.org/10.3390/jcm12165231
|

Camara-Lemarroy CR, Ibarra-Yruegas BE, Gongora-Rivera F. Gastrointestinal complications after ischemic stroke. J Neurol Sci. 2014;346(1-2):20-5. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jns.2014.08.027

Mu Q, Zhang Y, Gu L, Gerner ST, Qiu X, Tao Q, et al. Transcriptomic Profiling Reveals the Antiapoptosis and Antioxidant Stress Effects of Fos in Ischemic Stroke. Front Neurol. 2021;12:728984. DOI: https://doi.org/10.3389/fneur.2021.728984
|

Zeng X, Gao X, Peng Y, Wu Q, Zhu J, Tan C, et al. Higher Risk of Stroke Is Correlated With Increased Opportunistic Pathogen Load and Reduced Levels of Butyrate-Producing Bacteria in the Gut. Front Cell Infect Microbiol. 2019;9:4. DOI: https://doi.org/10.3389/fcimb.2019.00004
|

Ojeda J, Ávila A, Vidal PM. Gut Microbiota Interaction with the Central Nervous System throughout Life. J Clin Med. 2021;10(6):1299. doi: https://doi.org/10.3390/jcm10061299
|

Lee SH, Han C, Shin C. IUPHAR review: Microbiota-gut-brain axis and its role in neuropsychiatric disorders. Pharmacol Res [Internet]. 2025[cited 2026 Jan 23];216:107749. Available from: https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S1043661825001744?via%3Dihub doi: https://doi.org/10.1016/j.phrs.2025.107749
|

Babaei P, Faraji N, Eyvani K. c-Fos Expression Differentially Acts in the Healthy Brain Compared with Alzheimer’s Disease. Gene Expression. 2025;24(3):209-18. DOI: http://dx.doi.org/10.14218/GE.2024.00080

Lara Aparicio SY, Laureani Fierro ÁJ, Aranda Abreu GE, Toledo Cárdenas R, García Hernández LI, Coria Ávila GA, et al. Current Opinion on the Use of c-Fos in Neuroscience. NeuroSci. 2022;3(4):687-702. doi: https://doi.org/10.3390/neurosci3040050

Yan M, Ni F, Xie X, Zhang C, Zhu J. The Role of Formononetin in Cerebral Ischemia-Reperfusion Injury: A New Mediator of c-Fos/IL-10/STAT3 Signaling Pathway. Front Biosci (Landmark Ed). 2025;30(5):26274. DOI: https://doi.org/10.31083/FBL26274
|

Qi L, Wu C, Sun H, Liao H. The Role of Glutamate Receptors in Ischemic Stroke Author links open overlay panel. Biocell. 2025;49(2):167-80. DOI: https://doi.org/10.32604/biocell.2025.059159

Hua W, Zhang X, Tang H, Li C, Han N, Li H, et al. AKG Attenuates Cerebral Ischemia-Reperfusion Injury through c-Fos/IL-10/Stat3 Signaling Pathway. Oxid Med Cell Longev [Internet]. 2022[cited 2026 Jan 27];2022:6839385. Available from: https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC9113869/pdf/OMCL2022-6839385.pdf DOI: https://doi.org/10.1155/2022/6839385
|

Cruz-Mendoza F, Jauregui-Huerta F, Aguilar-Delgadillo A, García-Estrada J, Luquin S. Immediate Early Gene c-fos in the Brain: Focus on Glial Cells. Brain Sci. 2022;12(6):687. DOI: https://doi.org/10.3390/brainsci12060687
|

Stetska VO, Holota YuV, Gonchar SYu, Korbush MYu, Dovbynchuk TV, Serhiychuk TM, et al. Comparison of long-term effect of twodysbiosis models in WISTAR rats. Microbiology and Biotechnology. 2019;2:6-15. DOI: https://doi.org/10.18524/2307-4663.2019.2(46).163699

Kaya AH, Erdogan H, Tasdemiroglu E. Searching Evidences of Stroke in Animal Models: A Review of Discrepancies. Turk Neurosurg. 2017;27(2):167-73. DOI: 10.5137/1019-5149.JTN.15373-15.2
|

Kоnig JF, Klippel PA. The rat brain. A Stereotaxis atlas of forebrain and lower part of the brain stem. Hardcover: The Williams and Wilkins Company; 1963. 162 p.

Köylü A, Altunkaynak BZ, Delibaş B. Effects of tacrolimus on c-fos in hippocampus and memory performances in streptozotocin model of Alzheimer’s disease of rats. Turk J Med Sci. 2021;51(4):2159-66. DOI: https://doi.org/10.3906/sag-2008-291
|

Liu G, Yu Q, Tan B, Ke X, Zhang C, Li H, et al. Gut dysbiosis impairs hippocampal plasticity and behaviors by remodeling serum metabolome. Gut Microbes [Internet]. 2022[cited 2026 Jan 23];14(1):2104089. Available from: https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC9327780/pdf/KGMI_14_2104089.pdf DOI: https://doi.org/10.1080/19490976.2022.2104089
|

Xu Q, Sun L, Chen Q, Jiao C, Wang Y, Li H, et al. Gut microbiota dysbiosis contributes to depression-like behaviors via hippocampal NLRP3-mediated neuroinflammation in a postpartum depression mouse model. Brain Behav Immun. 2024;119:220-35. DOI: https://doi.org/10.1016/j.bbi.2024.04.002
|

Pate T, Anthony DC, Radford-Smith DE. cFOS expression in the prefrontal cortex correlates with altered cerebral metabolism in developing germ-free mice. Front Mol Neurosci [Internet]. 2023[cited 2026 Jan 27];16:1155620. Available from: https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC10157641/pdf/fnmol-16-1155620.pdf DOI: https://doi.org/10.3389/fnmol.2023.1155620
|

Chidambaram SB, Rathipriya AG, Mahalakshmi AM, Sharma S, Hediyal TA, Ray B, et al. The Influence of Gut Dysbiosis in the Pathogenesis and Management of Ischemic Stroke. Cells. 2022;11(7):1239. DOI: https://doi.org/10.3390/cells11071239
|

Meng Q, Ye C, Lu Y. miR-181c regulates ischemia/reperfusion injury-induced neuronal cell death by regulating c-Fos signaling. Pharmazie. 2020;75(2-3):90-3. DOI: https://doi.org/10.1691/ph.2020.9856
|

##submission.downloads##

Опубліковано

2026-03-27

Як цитувати

Ткачук, С., Кисилиця, С., & Ткачук, О. (2026). РЕАКЦІЯ ГЕНА РАННЬОЇ ФУНКЦІОНАЛЬНОЇ АКТИВНОСТІ c-fos У ПРЕФРОНТАЛЬНІЙ КОРІ ТА ПОЛІ ГІПОКАМПА СА1 НА НЕПОВНУ ГЛОБАЛЬНУ ІШЕМІЮ-РЕПЕРФУЗІЮ ГОЛОВНОГО МОЗКУ У ЩУРІВ ІЗ КИШЕЧНИМ ДИСБАКТЕРІОЗОМ. Неонатологія, хірургія та перинатальна медицина, 16(1(59), 205–212. https://doi.org/10.24061/2413-4260.XVI.1.59.2026.27