ДОСЛІДЖЕННЯ ЕКСПРЕСІЇ ІМУНОГІСТОХІМІЧНОГО МАРКЕРА KI-67 У ТРАХЕЇ ТА ГОЛОВНИХ БРОНХАХ ЩУРІВ: ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНИЙ ПІДХІД

Автор(и)

DOI:

https://doi.org/10.24061/2413-4260.XV.3.57.2025.16

Ключові слова:

експресія; маркер проліферації; Ki-67; трахея; головні бронхи; білі аутбредні щури; клітинна проліферація; локалізація; запальні процеси.

Анотація

Ревматоїдний артрит є хронічним системним запальним захворюванням сполучної тканини, що характеризується прогресуючим ураженням, яке в першу чергу вражає периферичні (синовіальні) суглоби через симетричний, прогресуючий, ерозивно-деструктивний поліартрит, причому в деяких випадках спостерігаються характерні позасуглобові прояви.

Мета дослідження. Це дослідження мало на меті оцінити морфологічні зміни в лімфоїдних структурах трахеї та бронхів у білих щурів, підданих експериментальній моделі ревматоїдного артриту з використанням повного ад'юванта Фрейнда, з особливим акцентом на аналізі експресії маркера проліферації Ki-67.

Матеріали та методи. Експериментальна когорта складалася з 30 нелінійних білих щурів віком чотири місяці (обох статей) із середньою масою тіла 170,5 ± 9,1 г. Усі лабораторні тварини походили з одного віварію та утримувалися в стандартних умовах із відносною вологістю (50-60%), температурою навколишнього середовища (19-22 °C) та 12-годинним циклом світло/темрява.

Принципи біоетики, затверджені Науковою радою Бухарського державного медичного інституту, зберігаються та дотримуються у повній відповідності.

Методи, які використовувалися для статистичної обробки даних, були t-тест, χ²-тест та кореляційний аналіз. Дослідження було проведене відповідно до плану досліджень Бухарського державного медичного інституту у рамках теми «Раннє виявлення та діагностика патологічних чинників, що впливають на здоров’я населення Бухарського регіону у пост-COVID-19 період, а також розробка нових методів лікування та профілактики (2022-2026)».

Результати та обговорення. Позитивно забарвлені клітини в зазначених ділянках були кількісно оцінені як відсоткові співвідношення відносно загальної кількості клітин на мікроскопічному полі. Рівні експресії були класифіковані наступним чином: низька експресія (≤20%), помірна експресія (20–60%) та висока експресія (>60%). Аналіз зразків трахеї виявив 1547 клітин, серед яких 189 клітин продемонстрували позитивну експресію маркера проліферації Ki-67, що вказує на проліферативну активність. Решта 1358 клітин показали негативність Ki-67, що свідчить про переважну клітинну спокійність. Загальний рівень позитивної експресії 12,21% вказує на низьку проліферативну активність у гіперпластичній лімфоїдній тканині трахеї.

Висновки. Гетерогенні патерни експресії проліферації Ki-67 у трахеобронхіальних тканинах щурів з експериментальним ревматоїдним артритом можуть відображати регіональні варіації судинної перфузії в різних сегментах трахеї та головних бронхів.

Посилання

Hassan NH, El-Wafaey DI. Histopathological scoring system role in evaluation of electronic cigarette’s impact on respiratory pathway in albino rat: Biochemical, histo-morphometric and ultrastructural study. Tissue and Cell. 2022;79:101945. DOI: https://doi.org/10.1016/j.tice.2022.101945. PMID: 36240715.

Pavlov AV, Tjumina NA, Ermakova OV. Funkcional'naja morfologija jepitelija bronhov krys posle vozdejstvija hronicheskogo nizkointensivnogo γ-izluchenija [Functional morphology of the bronchial epithelium in rats after exposure to chronic low-intensity γ-radiation]. Acta Medica Eurasica. 2024;4:46-55. DOI: https://doi.org/10.47026/2413-4864-2024-4-46-55. (in Russian)

Zarina KZ, Pilmane M. Expression of markers Ki-67, Nestin, VEGF, CD34 and apoptosis in relatively healthy lung tissue with non-changed and metaplastic bronchial epithelium. Medical Sciences. 2022;11(1):7. DOI: https://doi.org/10.3390/medsci11010007. PMID: 36649044; PMCID: PMC9844367.

Babalık M, Topaloglu İ, Salturk Z, Berkiten G, Atar Y, Tutar B, et al. The effects of exposure to environmental cigarette smoke on the vocal folds of rats. Journal of Voice. 2018;32(6):652-4. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jvoice.2017.09.006. PMID: 29055681.

Yoon JH, Seo HS, Lee J, Moon C, Lee K. Acute high-level toluene exposure decreases hippocampal neurogenesis in rats. Toxicology and industrial health. 2016;32(11):1910-20. DOI: https://doi.org/10.1177/0748233715599087. PMID: 26475279.

Okamoto H, Muraki I, Okada H, Tomita H, Suzuki K, Takada C, et al. Recombinant antithrombin attenuates acute respiratory distress syndrome in experimental endotoxemia. Am J Pathol. 2021;191(9):1526-36. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ajpath.2021.05.015. PMID: 34116023; PMCID: PMC8278305.

Neto-Neves EM, Brown MB, Zaretskaia MV, Rezania S, Goodwill AG, McCarthy BP, et al. Chronic embolic pulmonary hypertension caused by pulmonary embolism and vascular endothelial growth factor inhibition. Am J Pathol. 2017;187(4):700-12. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ajpath.2016.12.004. PMID: 28183533; PMCID: PMC5397717.

Umeda S, Miyagawa S, Fukushima S, Oda N, Saito A, Sakai Y, et al. Enhanced pulmonary vascular and alveolar development via prenatal administration of a slow-release synthetic prostacyclin agonist in rat fetal lung hypoplasia. PLoS One. 2016;11(8):e0161334. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0161334. PMID: 27529478; PMCID: PMC4987057.

Li Y, Wu Q, Li L, Chen F, Bao J, Li W. Decellularization of porcine whole lung to obtain a clinical‐scale bioengineered scaffold. J Biomed Mater Res A. 2021;109(9):1623-32. DOI: https://doi.org/10.1002/jbm.a.37158. PMID: 33682365.

Favre S, Gambini E, Nigro P, Scopece A, Bianciardi P, Caretti A, et al. Sildenafil attenuates hypoxic pulmonary remodelling by inhibiting bone marrow progenitor cells. J Cell Mol Med. 2017;21(5):871-80. DOI: https://doi.org/10.1111/jcmm.13026. PMID: 27860185; PMCID: PMC5387166.

Li X, Liu H, Yu W, Liu X, Liu C. Tandem mass tag (TMT) proteomic analysis of fetal lungs revealed differential expression of tight junction proteins in a rat model of congenital diaphragmatic hernia. Biomed Pharmacoth. 2020;121:109621. DOI: https://doi.org/10.1016/j.biopha.2019.109621. PMID: 31734580.

Shakeri F, Roshan NM, Kaveh M, Eftekhar N, Boskabady MH. Curcumin affects tracheal responsiveness and lung pathology in asthmatic rats. Pharmacological Reports. 2018;70(5):981-7. DOI: https://doi.org/10.1016/j.pharep.2018.04.007. PMID: 30107348.

Keyhanmanesh R, Alipour MR, Ebrahimi H, Aslani MR. Effects of diet-induced obesity on tracheal responsiveness to methacholine, tracheal visfatin level, and lung histological changes in ovalbumin-sensitized female wistar rats. Inflammation. 2018;41:846-58. DOI: https://doi.org/10.1007/s10753-018-0738-2. PMID: 29380115.

Kirilina VM, Smirnova OE, Blazhevich LE, Chepurina IV. The Role of Afferent C-Fibers in Muscle Contraction of Trachea and Bronchi in Rats. World's Veterinary Journal. 2020;10(3):437-45. DOI: https://dx.doi.org/10.36380/scil.2020.wvj54

Erdem AO, Erel VK, Girit O, Erdogan H, Ozkısacık S, Yazıcı M. Effects of Local Anesthetics on Smooth Muscle Tissue in Rat Trachea: An In Vitro Study. Turkish Thoracic Journal. 2020;21(4):223. DOI: https://doi.org/10.5152/turkthoracj.2019.19016

Zehtabvar O, Masoudifard M, Rostami A, Akbarein H, Sereshke AH, Khanamooeiashi M, et al. CT anatomy of the lungs, bronchi and trachea in the Mature Guinea pig (cavia porcellus). Vet Med Sci. 2023;9(3):1179-93. DOI: https://doi.org/10.1002/vms3.1131. PMID: 37017606; PMCID: PMC10188081.

Valenga MH, Vitorasso RD, Rodrigues TG, Pazetti R, Cardoso PF, Moriya HT, et al. An in vivo image acquisition system for the evaluation of tracheal mechanics in rats. Artificial Organs. 2020;44(5):504-12. DOI: https://doi.org/10.1111/aor.13604. PMID: 31715014.

Stucki AO, Sauer UG, Allen DG, Kleinstreuer NC, Perron MM, Yozzo KL, et al. Differences in the anatomy and physiology of the human and rat respiratory tracts and impact on toxicological assessments. Regulatory Toxicology and Pharmacology. 2024:105648. DOI: https://doi.org/10.1016/j.yrtph.2024.105648. PMID: 38772524; PMCID: PMC11198871.

Filep A, Fodor GH, Kun-Szabo F, Tiszlavicz L, Razga Z, Bozso G, et al. Exposure to urban PM1 in rats: development of bronchial inflammation and airway hyperresponsiveness. Respir Res. 2016;17:26. DOI: https://doi.org/10.1186/s12931-016-0332-9. PMID: 26966003; PMCID: PMC4785744.

Li S, Ai Q, Liang H, Liu H, Yang C, Deng H, et al. Nonintubated robotic-assisted thoracic surgery for tracheal/airway resection and reconstruction: technique description and preliminary results. Ann Surg. 2022;275(2):e534-6. DOI: https://doi.org/10.1097/sla.0000000000004887. PMID: 33856370; PMCID: PMC8746902.

Ghorani V, Marefati N, Shakeri F, Rezaee R, Boskabady M, Boskabady MH. The effects of Allium cepa extract on tracheal responsiveness, lung inflammatory cells and phospholipase A2 level in asthmatic rats. Iran J Allergy Asthma Immuno. 2018;17(3):221-31. PMID: 29908539.

Shakeri F, Roshan NM, Boskabady MH. Hydro-ethanolic extract of Curcuma longa affects tracheal responsiveness and lung pathology in ovalbumin-sensitized rats. Int J Vitam Nutr Res. 2020;90(1-2):141-50. DOI: https://doi.org/10.1024/0300-9831/a000524. PMID: 30789805.

Wagner R, Amonkar GM, Wang W, Shui JE, Bankoti K, Tse WH, et al. A tracheal aspirate-derived airway basal cell model reveals a proinflammatory epithelial defect in congenital diaphragmatic hernia. Am J Respir Crit Care Med. 2023;207(9):1214-26. DOI: https://doi.org/10.1164/rccm.202205-0953oc. PMID: 36731066; PMCID: PMC10161756.

##submission.downloads##

Опубліковано

2025-10-08

Як цитувати

Харібова, О., & Мелієв, Ф. (2025). ДОСЛІДЖЕННЯ ЕКСПРЕСІЇ ІМУНОГІСТОХІМІЧНОГО МАРКЕРА KI-67 У ТРАХЕЇ ТА ГОЛОВНИХ БРОНХАХ ЩУРІВ: ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНИЙ ПІДХІД. Неонатологія, хірургія та перинатальна медицина, 15(3(57), 116–120. https://doi.org/10.24061/2413-4260.XV.3.57.2025.16